特異性IgG抗體的制備：

在標記的免疫測定或其他技術(shù)中將特異性抗體純化出來，是極為重要的。例如在ELISA，用于包被的抗體一定要用特異性IgG，才能得到良好的效果。這是因為全血清中有大量非抗體蛋白，如白蛋白、α1和α2球蛋白等，如不除去，會干擾包被。再如反相間接血凝，致敏紅細胞的抗體也需用特異性IgG的I（ab＇）2才能使實驗滿意。特異性IgG和F（ab＇）2的制備方法有如下幾種。

（一）粗提法提取球蛋白

大多用硫酸銨鹽析法或硫酸鈉鹽析法。硫酸銨鹽析須經(jīng)過多次沉淀，第一次用40%飽和度，第二次用35%飽和度，第三次用33%飽和度，經(jīng)三次提取后的γ球蛋白基本是IgG成分。硫酸鈉法更簡便，用20%即可將γ球蛋白沉淀出來。經(jīng)鹽析后的γ球蛋白雖大多屬于IgG，但還有5%其他區(qū)帶蛋白，如γ區(qū)的雜蛋白。又因IgG組分中還含其他所謂正常的IgG，醫(yī)|學(xué)教育網(wǎng)搜集整理產(chǎn)生干擾。因此鹽析法粗提的γ球蛋白只能用于一般的實驗，或者是抗體效價較高的抗血清。

（二）離子交換層析法提取IgG

常用的離子交換劑有DEAE纖維素或QAE纖維素，以QAE-Sephadex最為理想，DE22、32、52也可應(yīng)用。取QAE-SephadexA25或A50經(jīng)酸處理并在0.05mol/LpH7.5～8.6的磷酸鹽緩沖液中平衡，將水分抽干，稱濕重Ig加于10ml血清中，在室溫30min后，離心或過濾除去離子交換劑。上清液再如此處理一次，即獲得較純的IgG，甚至不含其他雜蛋白。用該技術(shù)純化IgG簡便，不損壞抗體，既可小量提取，也可大量制備。

（三）親和層析法提取特異性IgG

將純化抗原或粗制抗原（如是單價特異性則對抗原要求不高）交聯(lián)Sepharose4B制成親和層析柱，將抗血清過柱后洗去未結(jié)合的雜蛋白，再用硫氰酸鉀洗脫，流出的是純的特異性IgG抗體。因硫氰酸鉀對抗體有破壞作用，應(yīng)及時透析除去。純化的IgG因含量低，失去保護作用，應(yīng)及時應(yīng)用或凍干保存，亦可20℃保存，但皆不理想；加入三乙醇胺或甘油可起保護作用。

（四）酶解法制備F（ab＇）2片段

胃蛋白酶對IgG的作用點是在連接兩重鏈的二硫鍵靠C端處（232氨基酸處），結(jié)果兩個Fab由二硫鍵連接，保留了抗體的結(jié)合點。與IgG相比，F(xiàn)（ab＇）2的特點是去掉了Fc段，這樣在細胞免疫實驗中免除了受體作用；同時也使IgG失去主要的抗原特性，不被抗IgG抗體結(jié)合；在反向間接血凝中，用F（ab＇）2致敏羊紅細胞比用IgG效果好。